超氧化物歧化酶(SOD)是生物體系中抗氧化酶系的重要組成成員,廣泛分布在微生物、植物和動物體內(nèi)。其是在上個世紀末才被發(fā)現(xiàn),可以說是生物醫(yī)學(xué)研究史上的一項重大成果,于人類生命研究具有極其重要的意義。今天我們就給大家分享一下如何通過比色法測定植物酶活SOD。
所有試劑除注明者外,均為分析純。
1.1 磷酸緩沖液:
A液:0.2M的KH2PO4溶液?分析純KH2PO4? 27.216克,用蒸餾水定容至1000毫升。?
B液:0.2M的K2HPO4溶液?分析純K2HPO4?3H2O?45.644克,用蒸餾水定容至1000毫升。
或?
A液:0.2M的NaH2PO4溶液?分析純NaH2PO4?2H2O? 31.21克,用蒸餾水定容至1000毫升。?
B液:0.2M的Na2HPO4溶液? 分析純Na2HPO4?12H2O?71.64克,用蒸餾水定容至1000毫升。
1.2 母液的配制:?
(1)0.5M?磷酸緩沖液(PH=7.8):A液21.25ml+B液228.25ml定容至1000ml;?
(2)130mM?Met(甲硫氨酸):取1.9399克Met?用磷酸緩沖液(PH=7.8)定容至100ml;?
(3)750μM四氮唑藍(NBT):取0.06133gNBT用磷酸緩沖液(PH=7.8)定容至100ml(避光保存);?
(4)100μM?EDTA-Na2:取0.0372g?EDTA-Na2用磷酸緩沖液(PH=7.8)定容至1000ml;?
(5)20μM?FD?(核黃素):0.00753gFD用磷酸緩沖液(PH=7.8)定容至1000ml(現(xiàn)配現(xiàn)用)。?
1.3 SOD反應(yīng)液:?
磷酸緩沖液(PH=7.8):Met:NBT:EDTA-Na2:核黃素(FD):H2O的比例為15:3:3:3:3:2.5,按母液順序配制。?
萬分之一分析天平、紫外分光光度計、醫(yī)用離心機、研缽
取新鮮樣本剪碎充分混勻后,裝入樣本瓶放入4℃冷藏備用。
4.1 酶液的制備:?
稱取鮮樣0.5g放入研缽中,加5毫升PH=7.8的磷酸緩沖液,冰浴研磨,勻漿倒入離心管中,冷凍離心20分鐘(10000×g),上清液(酶液)倒入試管中,置于0~4℃下保存待用。?
4.2 SOD的測定?
取型號相同的試管,吸取20ul的酶液,加入3ml反應(yīng)液,4000Lux照光(多用為環(huán)形日光燈的光照培養(yǎng)箱)30分鐘(盡量做到照光情況一致)
4.3 空白與對照的制備
同時取四支試管,三支做對照(CK),一支做空白(不加酶液,以緩沖液代替);空白置暗處,對照(CK)與酶液同至于4000Lux條件下照光30分鐘,遮光保存,以空白調(diào)零,560nm比色。?
4.4 若光照后顏色過深,可適當(dāng)多取酶液進行測定
SOD總活性(吸光度/g·FW)=(ACK—A)×V/(W×0.5×ACK)
式中:
ACK--為對照在560nm下測得的吸光度;
A--為試樣在?560nm下測得的吸光度;
V--為提取液體積,ml;
W--為稱取試樣鮮重的質(zhì)量,g;
0.5--為光照時間,h;
單位:NBT光還原50%為單位?
SOD比活性(酶單位/mg蛋白)=?SOD總活性/可溶性蛋白質(zhì)濃度