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文獻解讀原名:Accumulation of soil microbial extracellular and cellular residues during forest rewilding: Implications for soil carbon stabilization in older plantations譯名:人工林長期自然演化過程促進土壤微生物殘留物碳的積累:老齡人工林土壤有機碳的固持作用期刊:Soil Biology and BiochemistryIF:9.7發(fā)表時間:2023.11第一作者:石 珂通訊作者:阮宏華教授01研究背景森林是全球最大的陸地碳庫,其中三分之二的碳儲存在土壤中,在全球碳循環(huán)過程和應對全球氣候變化中發(fā)揮至關重要的作用。然而,自上世紀以來,天然林以前所未有的速度消失,現(xiàn)存的天然林迫切需要保護,這導致了人工林的建立和迅速擴張。目前,為了幫助人工林提供多種生態(tài)系統(tǒng)服務,提倡減少人為干預以鼓勵人工林的自然演化。然而,不同土壤有機碳組分對全球氣候變化和人工林自然演替的響應存在差異。微生物殘留物作為土壤有機碳(Soil organic carbon, SOC)的重要成分,其是否會隨著林分發(fā)育而增加,對土壤有機碳庫的貢獻又如何變化仍不清楚。02研究方法該項研究將微生物殘留物分為胞外殘留物和胞內(nèi)殘留物,以胞外聚合物(Extracellular...
發(fā)布時間: 2023 - 12 - 04
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作者:
發(fā)布時間: 2021 - 09 - 01
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關于栢暉——成都栢暉生物科技有限公司(以下稱“栢暉生物”)成立于2014年,是一家專注于為生態(tài)、農(nóng)業(yè)、林業(yè)等科學研究領域提供技術服務的新技術企業(yè)。栢暉生物旗下涵蓋一家全資子公司——成都栢暉檢測技術服務有限公司,是一家擁有成熟、完善的實驗室管理體系的三方檢測機構。檢測項目——部分實驗平臺——
作者:
發(fā)布時間: 2021 - 08 - 20
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Abstract: Understanding the effects of changing climate and long-term human activities on soil organic carbon (SOC) and the mediating roles of microorganisms is critical to maintain soil C stability in agricultural ecosystem. Here, we took samples from a long-term soil transplantation experiment, in which large transects of Mollisol soil in a cold temperate region were translocated to warm temperate and mid-subtropical regions to simulate different climate conditions, with a fertilization treatment on top. This study aimed to understand fertilization effect on SOC and the role of soil microorganisms featured after long-term community incubation in warm climates. After 12 years of soil transplantation, fertilization led to less reduction of SOC, in which aromatic C increased and the consumption of O-alkyl C and carbonyl C decreased. Soil live microbes were analyzed using propidium monoazide to remove DNAs from dead cells, and their network modulization explained 60.4% of variations in soil labile C. Single-cell Raman spectroscopy combined w...
作者:
發(fā)布時間: 2021 - 08 - 20
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1、范圍:本標準規(guī)定了分光光度法測定水果、蔬菜及其制品中葉綠素含量的方法。本標準適用于水果、蔬菜及其制品中葉綠素a含量、葉綠素b含量和葉綠素總含量的測定。本標準方法中葉綠素a的線性范圍為0.004 mg/g ~0.018 mg/ g,葉綠素b的線性范圍為0.005mg/g~0.020mg/g。2、原理:試樣中的葉綠素用無水乙醇和丙酮1:1(V :V)混合液提取,試液分別測定645nm和663 nm處吸光度值,利用Arnon公式計算試樣葉綠素含量。3、試劑除非另有說明,所用水為(GB/T 6682  分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法)中規(guī)定的三級水及以上,試劑均為分析純試劑。3.1無水乙醇。3.2 丙酮。3.3提取劑:無水乙醇和丙酮1:1(V:V)混合液。4、儀器4.1 分光光度計。4.2分析天平(±0.01g)。4.3高速組織搗碎機:0 r/ min~2 000r/ min。5、分析步驟5.1試樣制備5.1.1含水量較多的樣品取代表性樣品,切碎,混勻,用組織搗碎機制成勻漿,備用。5.1.2 含水量較少的制品取代表性樣品,按1:1(m : m)的比例加入蒸餾水,用組織搗碎機制成勻漿,備用。5.2 試液制備深綠色樣品、準確稱取0.5g試樣于三角瓶中,加人100 mL提取劑。綠色樣品,準確稱取0.5g試樣于三角瓶中,加入10mL提取劑。淺綠色樣品,稱取2.0g~5.0g試樣于三角瓶中,加入10mL提取劑。三角瓶用封口膜密封,室溫下避光靜置提取5 h,過濾,濾液待測。注意:光照和高溫會使葉綠素發(fā)生氧化和分解,試液制備時應避免高溫和光照。5.3試液的測定以提取劑為空白溶液,凋零點。分別在645nm和663nm處測定試液的吸光度值。6、結果計算試樣中葉綠素a含量、葉綠素b含量和葉綠素總含量均以質(zhì)量分數(shù)w表示,單位為毫克每克(mg/g),分別按式(1)、式(2)和式(3)計算。W1=(12.72×A1-2.59×A2)×v/(1000×m).........(1)式中:W1------葉綠素a含量,單位為毫克每克(mg/g);A1------試液在663nm處的吸光值;A2------試液在645nm處的吸光值;v------試液體積,單位為毫升(mL);m------試液質(zhì)量,單位為克(g)。計算結果保留3位有效數(shù)字。W2=(22.88×A2-4.67×A1)×v/(1000×m)..........(2)式中:W2------葉綠素b含量,單位為毫克每克(mg/g)計...
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發(fā)布時間: 2021 - 08 - 20
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摘要:最近的研究強調(diào),真菌菌絲殘體是土壤C和N輸入和儲存的重要組成部分。因此,識別控制真菌殘體分解的微生物群落和生態(tài)因子將為了解真菌有機質(zhì)如何影響森林土壤C和養(yǎng)分循環(huán)提供關鍵的見解。我們調(diào)查了真菌殘體上定殖的微生物群落的長期動態(tài)過程,利用不同網(wǎng)孔大小的培養(yǎng)袋以控制植物根系和微生物分解者的參與。在30個月的培養(yǎng)過程中,殘體相關的細菌和真菌群落在分類和功能上都很豐富,寡營養(yǎng)細菌和根相關真菌(即ECM真菌、ERM真菌和內(nèi)生真菌)的豐度在網(wǎng)袋分解后期增加。殘體相關的β-葡萄糖苷酶活性在6個月時最高,而亮氨酸氨基肽酶在18個月時最高。基于漸近分解模型,根的存在與真菌殘體最初更快的分解速率有關,但導致在稍后的采樣時間內(nèi)真菌殘體保留的更多。這些結果表明,微生物群落組成和酶活性在分解真菌殘體過程中保持動態(tài)變化,根系及其共生真菌導致微生物殘體周轉(zhuǎn)隨著時間的推移而減慢。關鍵詞:細菌,北方森林土壤,C循環(huán),ECM真菌,ERM真菌,真菌殘體,真菌,菌絲周轉(zhuǎn)。研究背景:死亡的真菌菌絲(以下簡稱真菌殘體)在土壤C、N循環(huán)中發(fā)揮著重要的作用。但迄今為止的大多數(shù)研究集中于短期的真菌殘體質(zhì)量損失以及與殘體分解相關的早期定殖的微生物群落??紤]到真菌殘體較難降解部分的長期存在,微生物分解者在何種程度上仍然活躍地占據(jù)這些部分尚不清楚。此外,很少有研究測量了與真菌殘體分解相關的酶,這與基于序列的鑒定可以幫助確定不同微生物分解者群體的目標資源。最后,根系可以加速或延緩土壤有機質(zhì)的分解。并且根系的存在也會影響各種與根系相關的微生物豐度,包括ECM真菌。然而目前尚不清楚隨著時間的推移與根系相關的ECM真菌是如何影響真菌殘體的。研究內(nèi)容:基于此,本研究對含有真菌殘體的網(wǎng)袋首先進行了高通量測序來識別6、18和30個月土壤培養(yǎng)后與真菌殘體分解相關的細菌和真菌群落。其次,在同一采樣時間內(nèi),定量了3種針對不同的C和N組分的酶(β-葡萄糖苷酶、亮氨酸氨基肽酶和N-乙酰葡萄糖苷酶)的活性。第三,重新分析了真菌殘體質(zhì)量損失率,以評估早期和后期取樣時根系存在的潛在不同影響。研究方法:本研究在赫爾辛基大學Hyytiälä林業(yè)野外觀測站和SMEAR II生態(tài)-大氣關系測量站進行。將原位培養(yǎng)的Chondrostereum purpureum殘體放入3種不同孔徑(1、50、1000μm)的尼龍網(wǎng)袋中,再將網(wǎng)袋隨機埋入有機層和礦質(zhì)層之間,并于分解的第6、18和30個月時收獲。研究結果:1. 與真菌殘體相關的細菌和真菌群落01細菌OTU豐富度隨時間增加相對穩(wěn)定,而真菌群落的OTU豐富度隨時間增加而增加(圖1)...
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發(fā)布時間: 2021 - 08 - 20
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1、范圍本標準規(guī)定了農(nóng)業(yè)生物質(zhì)原料中纖維素和半纖維素含量測定的高效液相色譜方法,以及木質(zhì)素含量測定的紫外分光光度方法和重量方法。本標準適用于農(nóng)作物秸稈纖維素、半纖維素及木質(zhì)素的測定。2、規(guī)范性引用文件GB/T 6682分析實驗室用水規(guī)格和實驗方法NY/T 3492 農(nóng)業(yè)生物質(zhì)原料 樣品制備3、試劑和材料除非另有說明,所有試劑均為分析純的試劑,色譜用水為GB/T 6682規(guī)定的一級水,其他使用三級水。3.1乙醇:95%.3.2 72%硫酸溶液:量取665 mL硫酸(98%),緩緩注入300 ml水中,冷卻,搖勻。3.3 碳酸鈣。3.4 D-纖維二糖、D(+)葡萄糖、D (+)木糖、D(+)半乳糖、L(+)阿拉伯糖、D(+)甘露糖標準品:純度≥95%。4、儀器和設備4.1 分析天平:感量0.1 mg。4.2 索氏抽提器:250 mL。4.3 電熱鼓風干燥箱:溫度可控制在(45±3)℃和(105±3)℃。4.4 恒溫水浴鍋:溫度可控制在(30±3)℃ 。4.5 高壓蒸汽滅菌器:溫度可控制在(121±3)℃ 。4.6 馬弗爐:可程序開溫,溫度可控制在(575±25)℃ 。4.7 耐壓試管:螺紋具塞,耐壓≥60psi。4.8 真空過濾器:配玻璃砂芯坩堝(G4)。4.9 高效液相色譜儀:配示差折光檢測器。4.10 紫外-可見分光光度計:可在 320 nm處測定吸光值。4.11  微孔過速器:帶0.22μm水相微孔濾膜。5、分析步驟:試樣制備按照NY/T 3492的規(guī)定執(zhí)行。5.2抽提5.2.1水抽提稱取2g~10g試樣(精確至0.1 mg)于已稱重的濾紙筒中,將濾紙筒放入索氏抽提器的抽提筒內(nèi),連接已干燥至恒重的接收瓶,由抽提器冷凝管上端加入190 mL水,于電熱套上加熱,使水不斷回流抽提(4次/h~5次/h),一般抽提6h~8h。抽提完成后,關閉加熱套,將索氏抽提器冷卻至室溫。5.2.2乙醇抽提將5.2.1水抽提后的抽提筒連接已干燥至恒重的接收瓶,由抽提器冷凝管上端加入190 mL乙醇,于電熱套上加熱,使乙醇不斷回流抽提(6次/h~10次/h),一般抽提16h~24h。抽提完成后,關閉加熱套,將索氏抽提器冷卻至室溫。經(jīng)兩步抽提后的生物質(zhì)試樣(即不含抽提物試樣)在(45±3)℃干燥箱中干燥至恒重,稱量試樣質(zhì)量精確至0.1 mg。5.3兩步法酸水解5.3.1坩堝恒重將玻璃砂芯坩鍋(G4)置于馬弗爐中,在(575±25)℃下灼燒至恒重。將坩堝從馬弗爐中...
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