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文獻(xiàn)解讀（2023.11發(fā)表）| 人工林長(zhǎng)期自然演化過(guò)程促進(jìn)土壤微生物殘留物碳的積累：老齡人工林土壤有機(jī)碳的固持作用

文獻(xiàn)解讀原名：Accumulation of soil microbial extracellular and cellular residues during forest rewilding: Implications for soil carbon stabilization in older plantations譯名：人工林長(zhǎng)期自然演化過(guò)程促進(jìn)土壤微生物殘留物碳的積累：老齡人工林土壤有機(jī)碳的固持作用期刊：Soil Biology and BiochemistryIF：9.7發(fā)表時(shí)間：2023.11第一作者：石珂通訊作者：阮宏華教授01研究背景森林是全球最大的陸地碳庫(kù)，其中三分之二的碳儲(chǔ)存在土壤中，在全球碳循環(huán)過(guò)程和應(yīng)對(duì)全球氣候變化中發(fā)揮至關(guān)重要的作用。然而，自上世紀(jì)以來(lái)，天然林以前所未有的速度消失，現(xiàn)存的天然林迫切需要保護(hù)，這導(dǎo)致了人工林的建立和迅速擴(kuò)張。目前，為了幫助人工林提供多種生態(tài)系統(tǒng)服務(wù)，提倡減少人為干預(yù)以鼓勵(lì)人工林的自然演化。然而，不同土壤有機(jī)碳組分對(duì)全球氣候變化和人工林自然演替的響應(yīng)存在差異。微生物殘留物作為土壤有機(jī)碳（Soil organic carbon, SOC）的重要成分，其是否會(huì)隨著林分發(fā)育而增加，對(duì)土壤有機(jī)碳庫(kù)的貢獻(xiàn)又如何變化仍不清楚。02研究方法該項(xiàng)研究將微生物殘留物分為胞外殘留物和胞內(nèi)殘留物，以胞外聚合物（Extracellular...

發(fā)布時(shí)間: 2023 - 12 - 04

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栢暉，您身邊的專(zhuān)業(yè)科研檢測(cè)機(jī)構(gòu)

作者：

發(fā)布時(shí)間： 2021 - 09 - 01

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關(guān)于栢暉——成都栢暉生物科技有限公司（以下稱(chēng)“栢暉生物”）成立于2014年，是一家專(zhuān)注于為生態(tài)、農(nóng)業(yè)、林業(yè)等科學(xué)研究領(lǐng)域提供技術(shù)服務(wù)的新技術(shù)企業(yè)。栢暉生物旗下涵蓋一家全資子公司——成都栢暉檢測(cè)技術(shù)服務(wù)有限公司，是一家擁有成熟、完善的實(shí)驗(yàn)室管理體系的三方檢測(cè)機(jī)構(gòu)。檢測(cè)項(xiàng)目——部分實(shí)驗(yàn)平臺(tái)——

不同氣候條件下長(zhǎng)期群落培養(yǎng)后微生物代謝及其殘?bào)w介導(dǎo)的施肥對(duì)有機(jī)碳的影響

作者：

發(fā)布時(shí)間： 2021 - 08 - 20

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Abstract: Understanding the effects of changing climate and long-term human activities on soil organic carbon (SOC) and the mediating roles of microorganisms is critical to maintain soil C stability in agricultural ecosystem. Here, we took samples from a long-term soil transplantation experiment, in which large transects of Mollisol soil in a cold temperate region were translocated to warm temperate and mid-subtropical regions to simulate different climate conditions, with a fertilization treatment on top. This study aimed to understand fertilization effect on SOC and the role of soil microorganisms featured after long-term community incubation in warm climates. After 12 years of soil transplantation, fertilization led to less reduction of SOC, in which aromatic C increased and the consumption of O-alkyl C and carbonyl C decreased. Soil live microbes were analyzed using propidium monoazide to remove DNAs from dead cells, and their network modulization explained 60.4% of variations in soil labile C. Single-cell Raman spectroscopy combined w...

水果、蔬菜及其制品中葉綠素含量的測(cè)定——分光光度法

作者：

發(fā)布時(shí)間： 2021 - 08 - 20

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1、范圍：本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了分光光度法測(cè)定水果、蔬菜及其制品中葉綠素含量的方法。本標(biāo)準(zhǔn)適用于水果、蔬菜及其制品中葉綠素a含量、葉綠素b含量和葉綠素總含量的測(cè)定。本標(biāo)準(zhǔn)方法中葉綠素a的線(xiàn)性范圍為0.004 mg/g ~0.018 mg/ g，葉綠素b的線(xiàn)性范圍為0.005mg/g~0.020mg/g。2、原理：試樣中的葉綠素用無(wú)水乙醇和丙酮1：1（V ：V）混合液提取，試液分別測(cè)定645nm和663 nm處吸光度值，利用Arnon公式計(jì)算試樣葉綠素含量。3、試劑除非另有說(shuō)明，所用水為（GB/T 6682 分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法）中規(guī)定的三級(jí)水及以上，試劑均為分析純?cè)噭?.1無(wú)水乙醇。3.2 丙酮。3.3提取劑：無(wú)水乙醇和丙酮1：1(V：V)混合液。4、儀器4.1 分光光度計(jì)。4.2分析天平(±0.01g)。4.3高速組織搗碎機(jī)：0 r/ min~2 000r/ min。5、分析步驟5.1試樣制備5.1.1含水量較多的樣品取代表性樣品，切碎，混勻，用組織搗碎機(jī)制成勻漿，備用。5.1.2 含水量較少的制品取代表性樣品，按1：1(m : m)的比例加入蒸餾水，用組織搗碎機(jī)制成勻漿，備用。5.2 試液制備深綠色樣品、準(zhǔn)確稱(chēng)取0.5g試樣于三角瓶中，加人100 mL提取劑。綠色樣品，準(zhǔn)確稱(chēng)取0.5g試樣于三角瓶中，加入10mL提取劑。淺綠色樣品，稱(chēng)取2.0g~5.0g試樣于三角瓶中，加入10mL提取劑。三角瓶用封口膜密封，室溫下避光靜置提取5 h，過(guò)濾，濾液待測(cè)。注意：光照和高溫會(huì)使葉綠素發(fā)生氧化和分解，試液制備時(shí)應(yīng)避免高溫和光照。5.3試液的測(cè)定以提取劑為空白溶液，凋零點(diǎn)。分別在645nm和663nm處測(cè)定試液的吸光度值。6、結(jié)果計(jì)算試樣中葉綠素a含量、葉綠素b含量和葉綠素總含量均以質(zhì)量分?jǐn)?shù)w表示，單位為毫克每克（mg/g），分別按式（1）、式（2）和式（3）計(jì)算。W1=（12.72×A1-2.59×A2）×v/（1000×m）.........（1）式中：W1------葉綠素a含量，單位為毫克每克（mg/g）；A1------試液在663nm處的吸光值；A2------試液在645nm處的吸光值；v------試液體積，單位為毫升（mL）；m------試液質(zhì)量，單位為克（g）。計(jì)算結(jié)果保留3位有效數(shù)字。W2=（22.88×A2-4.67×A1）×v/（1000×m）..........（2）式中：W2------葉綠素b含量，單位為毫克每克（mg/g）計(jì)...

北方森林中根系的存在改變了真菌殘?bào)w和相關(guān)微生物群落的長(zhǎng)期分解動(dòng)態(tài)

作者：

發(fā)布時(shí)間： 2021 - 08 - 20

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摘要：最近的研究強(qiáng)調(diào)，真菌菌絲殘?bào)w是土壤C和N輸入和儲(chǔ)存的重要組成部分。因此，識(shí)別控制真菌殘?bào)w分解的微生物群落和生態(tài)因子將為了解真菌有機(jī)質(zhì)如何影響森林土壤C和養(yǎng)分循環(huán)提供關(guān)鍵的見(jiàn)解。我們調(diào)查了真菌殘?bào)w上定殖的微生物群落的長(zhǎng)期動(dòng)態(tài)過(guò)程，利用不同網(wǎng)孔大小的培養(yǎng)袋以控制植物根系和微生物分解者的參與。在30個(gè)月的培養(yǎng)過(guò)程中，殘?bào)w相關(guān)的細(xì)菌和真菌群落在分類(lèi)和功能上都很豐富，寡營(yíng)養(yǎng)細(xì)菌和根相關(guān)真菌(即ECM真菌、ERM真菌和內(nèi)生真菌)的豐度在網(wǎng)袋分解后期增加。殘?bào)w相關(guān)的β-葡萄糖苷酶活性在6個(gè)月時(shí)最高，而亮氨酸氨基肽酶在18個(gè)月時(shí)最高。基于漸近分解模型，根的存在與真菌殘?bào)w最初更快的分解速率有關(guān)，但導(dǎo)致在稍后的采樣時(shí)間內(nèi)真菌殘?bào)w保留的更多。這些結(jié)果表明，微生物群落組成和酶活性在分解真菌殘?bào)w過(guò)程中保持動(dòng)態(tài)變化，根系及其共生真菌導(dǎo)致微生物殘?bào)w周轉(zhuǎn)隨著時(shí)間的推移而減慢。關(guān)鍵詞：細(xì)菌，北方森林土壤，C循環(huán)，ECM真菌，ERM真菌，真菌殘?bào)w，真菌，菌絲周轉(zhuǎn)。研究背景：死亡的真菌菌絲(以下簡(jiǎn)稱(chēng)真菌殘?bào)w)在土壤C、N循環(huán)中發(fā)揮著重要的作用。但迄今為止的大多數(shù)研究集中于短期的真菌殘?bào)w質(zhì)量損失以及與殘?bào)w分解相關(guān)的早期定殖的微生物群落?？紤]到真菌殘?bào)w較難降解部分的長(zhǎng)期存在，微生物分解者在何種程度上仍然活躍地占據(jù)這些部分尚不清楚。此外，很少有研究測(cè)量了與真菌殘?bào)w分解相關(guān)的酶，這與基于序列的鑒定可以幫助確定不同微生物分解者群體的目標(biāo)資源。最后，根系可以加速或延緩?fù)寥烙袡C(jī)質(zhì)的分解。并且根系的存在也會(huì)影響各種與根系相關(guān)的微生物豐度，包括ECM真菌。然而目前尚不清楚隨著時(shí)間的推移與根系相關(guān)的ECM真菌是如何影響真菌殘?bào)w的。研究?jī)?nèi)容：基于此，本研究對(duì)含有真菌殘?bào)w的網(wǎng)袋首先進(jìn)行了高通量測(cè)序來(lái)識(shí)別6、18和30個(gè)月土壤培養(yǎng)后與真菌殘?bào)w分解相關(guān)的細(xì)菌和真菌群落。其次，在同一采樣時(shí)間內(nèi)，定量了3種針對(duì)不同的C和N組分的酶(β-葡萄糖苷酶、亮氨酸氨基肽酶和N-乙酰葡萄糖苷酶)的活性。第三，重新分析了真菌殘?bào)w質(zhì)量損失率，以評(píng)估早期和后期取樣時(shí)根系存在的潛在不同影響。研究方法：本研究在赫爾辛基大學(xué)Hyytiälä林業(yè)野外觀(guān)測(cè)站和SMEAR II生態(tài)-大氣關(guān)系測(cè)量站進(jìn)行。將原位培養(yǎng)的Chondrostereum purpureum殘?bào)w放入3種不同孔徑（1、50、1000μm）的尼龍網(wǎng)袋中，再將網(wǎng)袋隨機(jī)埋入有機(jī)層和礦質(zhì)層之間，并于分解的第6、18和30個(gè)月時(shí)收獲。研究結(jié)果：1. 與真菌殘?bào)w相關(guān)的細(xì)菌和真菌群落01細(xì)菌OTU豐富度隨時(shí)間增加相對(duì)穩(wěn)定，而真菌群落的OTU豐富度隨時(shí)間增加而增加(圖1)...

農(nóng)業(yè)生物質(zhì)原料纖維素、半纖維素、木質(zhì)素測(cè)定

作者：

發(fā)布時(shí)間： 2021 - 08 - 20

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1、范圍本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了農(nóng)業(yè)生物質(zhì)原料中纖維素和半纖維素含量測(cè)定的高效液相色譜方法，以及木質(zhì)素含量測(cè)定的紫外分光光度方法和重量方法。本標(biāo)準(zhǔn)適用于農(nóng)作物秸稈纖維素、半纖維素及木質(zhì)素的測(cè)定。2、規(guī)范性引用文件GB/T 6682分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和實(shí)驗(yàn)方法NY/T 3492 農(nóng)業(yè)生物質(zhì)原料樣品制備3、試劑和材料除非另有說(shuō)明，所有試劑均為分析純的試劑，色譜用水為GB/T 6682規(guī)定的一級(jí)水，其他使用三級(jí)水。3.1乙醇:95%.3.2 72%硫酸溶液:量取665 mL硫酸(98%)，緩緩注入300 ml水中，冷卻，搖勻。3.3 碳酸鈣。3.4 D-纖維二糖、D(+)葡萄糖、D (+)木糖、D(+)半乳糖、L(+)阿拉伯糖、D(+)甘露糖標(biāo)準(zhǔn)品:純度≥95%。4、儀器和設(shè)備4.1 分析天平:感量0.1 mg。4.2 索氏抽提器:250 mL。4.3 電熱鼓風(fēng)干燥箱:溫度可控制在(45±3)℃和(105±3)℃。4.4 恒溫水浴鍋：溫度可控制在(30±3)℃ 。4.5 高壓蒸汽滅菌器：溫度可控制在(121±3)℃ 。4.6 馬弗爐:可程序開(kāi)溫，溫度可控制在(575±25)℃ 。4.7 耐壓試管:螺紋具塞，耐壓≥60psi。4.8 真空過(guò)濾器:配玻璃砂芯坩堝(G4)。4.9 高效液相色譜儀:配示差折光檢測(cè)器。4.10 紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì):可在 320 nm處測(cè)定吸光值。4.11 微孔過(guò)速器:帶0.22μm水相微孔濾膜。5、分析步驟：試樣制備按照NY/T 3492的規(guī)定執(zhí)行。5.2抽提5.2.1水抽提稱(chēng)取2g~10g試樣(精確至0.1 mg)于已稱(chēng)重的濾紙筒中，將濾紙筒放入索氏抽提器的抽提筒內(nèi),連接已干燥至恒重的接收瓶，由抽提器冷凝管上端加入190 mL水，于電熱套上加熱，使水不斷回流抽提(4次/h~5次/h)，一般抽提6h~8h。抽提完成后，關(guān)閉加熱套，將索氏抽提器冷卻至室溫。5.2.2乙醇抽提將5.2.1水抽提后的抽提筒連接已干燥至恒重的接收瓶，由抽提器冷凝管上端加入190 mL乙醇，于電熱套上加熱，使乙醇不斷回流抽提(6次/h~10次/h），一般抽提16h~24h。抽提完成后，關(guān)閉加熱套，將索氏抽提器冷卻至室溫。經(jīng)兩步抽提后的生物質(zhì)試樣(即不含抽提物試樣)在(45±3)℃干燥箱中干燥至恒重，稱(chēng)量試樣質(zhì)量精確至0.1 mg。5.3兩步法酸水解5.3.1坩堝恒重將玻璃砂芯坩鍋(G4)置于馬弗爐中，在(575±25)℃下灼燒至恒重。將坩堝從馬弗爐中...

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